※ Cajal body introduction

    Cajal bodies is a kind of non-membrane-bound nuclear bodies, formation of such sub-organelles usually involves dynamic processes, which can move within the nucleoplasm except when transiently immobilized through interaction with chromatin (1). The Cajal body has been suggested to be associated with telomere maintenance and maturation of the splicing machinery and processing of histone mRNA (2;3), it is rich in ribonucleoprotein (RNP) complexes and characterized by the marker protein coilin that interacts with many factors and thereby serves as a platform for the assembly of Cajal bodies (1). WRAP53β has been demonstrated to be an essential Cajal Body Component, it guides SMN across the cell to Cajal Bodies, and phosphorylation of WRAP53β by ATM promotes its involvement in the DNA damage response (4). besides, Fam118 is a newly identified component of Cajal bodies that is required for Cajal body formation (5). Defects in Cajal body formation are linked to impaired cell proliferation and splicing (6). In fact, Cajal bodies are not essential in telomerase function and telomere elongation ,whereas certain Cajal body factors such as WRAP53β clearly play important roles in telomere homeostasis (1).

References
1. Henriksson, S., & Farnebo, M. (2015) On the road with WRAP53beta: guardian of Cajal bodies and genome integrity. Front Genet, 6, 91. PMID: 25852739
2. Machyna, M., Heyn, P., & Neugebauer, K. M. (2013) Cajal bodies: where form meets function. Wiley Interdiscip Rev RNA, 4(1), 17-34. PMID: 23042601
3. Hutten, S., Chachami, G., Winter, U., Melchior, F., & Lamond, A. I. (2014) A role for the Cajal-body-associated SUMO isopeptidase USPL1 in snRNA transcription mediated by RNA polymerase II. J. Cell. Sci., 127(Pt 5), 1065-1078. PMID: 24413172
4. Coucoravas, C., Dhanjal, S., Henriksson, S., Bohm, S., & Farnebo, M. (2017) Phosphorylation of the Cajal body protein WRAP53beta by ATM promotes its involvement in the DNA damage response. RNA Biol., 14(6), 804-813. PMID: 27715493
5. Li, Y., Fong, K. W., Tang, M., Han, X., Gong, Z., Ma, W, Chen, J. (2014) Fam118B, a newly identified component of Cajal bodies, is required for Cajal body formation, snRNP biogenesis and cell viability. J. Cell Sci., 127(Pt 9), 2029-2039. PMID:24569877
6. Lemm, I., Girard, C., Kuhn, A. N., Watkins, N. J., Schneider, M., Bordonne, R., & Luhrmann, R. (2006) Ongoing U snRNP biogenesis is required for the integrity of Cajal bodies. Mol. Biol. Cell, 17(7), 3221-3231. PMID:16687569


Cajal body  in eukaryotes (Total number, Predicted number):

  Absidia glauca (20, 20)   Ailuropoda melanoleuca (46, 46)   Amborella trichopoda (19, 19)
  Anas platyrhynchos (35, 35)   Anolis carolinensis (40, 40)   Aotus nancymaae (48, 48)
  Arabidopsis lyrata (21, 21)   Arabidopsis thaliana (23, 23)   Ashbya gossypii (13, 13)
  Aspergillus clavatus (16, 16)   Aspergillus flavus (13, 13)   Aspergillus fumigatus (16, 16)
  Aspergillus nidulans (15, 15)   Aspergillus niger (16, 16)   Aspergillus oryzae (13, 13)
  Aspergillus terreus (15, 15)   Astyanax mexicanus (41, 41)   Beauveria bassiana (16, 16)
  Blumeria graminis (17, 17)   Bos taurus (47, 47)   Brachypodium distachyon (22, 22)
  Brassica napus (21, 21)   Brassica oleracea (21, 21)   Brassica rapa (21, 21)
  Caenorhabditis elegans (26, 26)   Callithrix jacchus (47, 47)   Canis familiaris (47, 47)
  Carlito syrichta (43, 43)   Cavia porcellus (46, 46)   Cercocebus atys (48, 48)
  Chlamydomonas reinhardtii (13, 13)   Chlorocebus sabaeus (48, 48)   Chondrus crispus (11, 11)
  Ciona intestinalis (28, 28)   Ciona savignyi (26, 26)   Colletotrichum gloeosporioides (13, 13)
  Colletotrichum graminicola (14, 14)   Colletotrichum orbiculare (15, 15)   Corchorus capsularis (14, 14)
  Cryptococcus neoformans (14, 14)   Cucumis sativus (20, 20)   Cyanidioschyzon merolae (10, 10)
  Danio rerio (39, 38)   Daucus carota (20, 20)   Dipodomys ordii (44, 44)
  Dothistroma septosporum (14, 14)   Drosophila melanogaster (25, 23)   Equus caballus (47, 47)
  Erinaceus europaeus (14, 14)   Felis catus (47, 47)   Ficedula albicollis (39, 39)
  Fukomys damarensis (45, 45)   Fusarium oxysporum (12, 12)   Fusarium solani (10, 10)
  Fusarium verticillioides (13, 13)   Gaeumannomyces graminis (13, 13)   Galdieria sulphuraria (16, 16)
  Gallus gallus (36, 36)   Gasterosteus aculeatus (41, 41)   Glycine max (23, 23)
  Gorilla gorilla (47, 47)   Gossypium raimondii (22, 22)   Helianthus annuus (22, 22)
  Homo sapiens (47, 1)   Hordeum vulgare (20, 20)   Ictalurus punctatus (41, 41)
  Ictidomys tridecemlineatus (47, 47)   Komagataella pastoris (14, 14)   Latimeria chalumnae (40, 40)
  Leersia perrieri (18, 18)   Lepisosteus oculatus (42, 42)   Leptosphaeria maculans (10, 10)
  Loxodonta africana (45, 45)   Macaca fascicularis (49, 49)   Macaca mulatta (47, 47)
  Macaca nemestrina (48, 48)   Magnaporthe oryzae (14, 14)   Magnaporthe poae (14, 14)
  Mandrillus leucophaeus (47, 47)   Manihot esculenta (21, 21)   Medicago truncatula (20, 20)
  Melampsora laricipopulina (17, 17)   Meleagris gallopavo (31, 31)   Mesocricetus auratus (45, 45)
  Microbotryum violaceum (16, 16)   Monodelphis domestica (44, 44)   Musa acuminata (22, 22)
  Mustela putorius furo (45, 45)   Mus musculus (46, 39)   Myotis lucifugus (46, 46)
  Neosartorya fischeri (16, 16)   Neurospora crassa (15, 15)   Nicotiana attenuata (17, 17)
  Nomascus leucogenys (47, 47)   Oreochromis niloticus (38, 38)   Ornithorhynchus anatinus (38, 38)
  Oryctolagus cuniculus (44, 44)   Oryza barthii (19, 19)   Oryza brachyantha (17, 17)
  Oryza glaberrima (18, 18)   Oryza glumaepatula (18, 18)   Oryza indica (21, 21)
  Oryza meridionalis (19, 19)   Oryza nivara (19, 19)   Oryza punctata (19, 19)
  Oryza rufipogon (18, 18)   Oryza sativa (18, 18)   Oryzias latipes (41, 41)
  Ostreococcus lucimarinus (14, 14)   Otolemur garnettii (45, 45)   Ovis aries (46, 46)
  Pan paniscus (47, 47)   Pan troglodytes (46, 46)   Papio anubis (48, 48)
  Pelodiscus sinensis (37, 37)   Phaeosphaeria nodorum (14, 14)   Phaseolus vulgaris (20, 20)
  Physcomitrella patens (18, 18)   Poecilia formosa (42, 42)   Pongo abelii (46, 46)
  Populus trichocarpa (25, 25)   Prunus persica (21, 21)   Puccinia graminis (17, 17)
  Puccinia triticina (16, 16)   Pyrenophora teres (14, 14)   Pyrenophora triticirepentis (12, 12)
  Rattus norvegicus (46, 46)   Rhinopithecus bieti (48, 48)   Saccharomyces cerevisiae (12, 12)
  Sarcophilus harrisii (43, 43)   Schizosaccharomyces cryophilus (17, 17)   Schizosaccharomyces japonicus (17, 17)
  Schizosaccharomyces pombe (17, 17)   Scleropages formosus (39, 39)   Sclerotinia sclerotiorum (11, 11)
  Scophthalmus maximus (40, 40)   Selaginella moellendorffii (19, 19)   Setaria italica (19, 19)
  Solanum lycopersicum (19, 19)   Solanum tuberosum (16, 16)   Sorghum bicolor (18, 18)
  Sporisorium reilianum (16, 16)   Sus scrofa (47, 47)   Taeniopygia guttata (35, 35)
  Takifugu rubripes (42, 42)   Tetraodon nigroviridis (37, 37)   Theobroma cacao (19, 19)
  Trichoderma reesei (15, 15)   Trichoderma virens (14, 14)   Triticum aestivum (24, 24)
  Triticum urartu (18, 18)   Tuber melanosporum (15, 15)   Tursiops truncatus (27, 27)
  Ursus maritimus (42, 42)   Ustilago maydis (15, 15)   Verticillium dahliae (14, 14)
  Vigna angularis (19, 19)   Vigna radiata (19, 19)   Vitis vinifera (19, 19)
  Xenopus tropicalis (41, 41)   Xiphophorus maculatus (42, 42)   Yarrowia lipolytica (14, 14)
  Zea mays (17, 17)   Zymoseptoria tritici (14, 14)